This part was designed for the construction of Whole-cell Biocatalysts 'BIND-bearPETase'. To ensure that this part functions as expected, Waseda-Tokyo2024 thoroughly investigated its properties through wet lab experiments, mathematical modeling, and energetic simulations. Furthermore, this part offers significant utility to the iGEM community by not only addressing the urgent need for improved plastic waste management but also expanding the availability of all enzymes.

Agenda

1. Overview

2. Components

3. Cloning & Expression

   • Functional Characterization

   • Curli Fiber Formation Assay

   • pNPB Hydrolysis Assay

   • Storage Activity Assay

   • Reusability Assay

   • PET Bottle Powder Degradation Assay

   • Plastic Pellet Degradation Assay

4. In Silico Energy Simulation

   • AutoDock

   • PyRosetta

   • FoldX

   • MACE

5. Mathematical Modeling

   • Membrane transport model

   • PET degradation efficiency model

6. Conclusion

Overview

We will provide an overview of the function of this part. The E. coli BL21(DE3) strain, into which this part was introduced, demonstrated the ability to degrade PET, a recalcitrant plastic, in the experiments detailed below. This "BIND-bearPETase" offers benefits that address the shortcomings of conventional free PETase.

This part encodes the CsgA-bearPETase fusion protein. CsgA is an extracellular fibrous structure-forming factor that constructs fibrous structures known as Curli Fibers on the surface of the E. coli membrane. By fusing PETase to CsgA, we enabled the presentation of PETase on the cell membrane surface in a fiber-linked manner.

This enables direct access to substrates without the need for purification, as well as the stabilization of enzyme activity and the reuse of enzymes. This is a technique referred to as the BIND-System ^[1], and whole-cell biocatalysts equipped with PETase are called BIND-PETase ^[2].

The key effort in this part was creating the optimal PETase for the BIND-System. BearPETase, uniquely developed by Waseda-Tokyo 2024, combines mutations from depoPETase (Shi et al., 2023) ^[3] and duraPETase (Cui et al., 2021) ^[4] developed through directed evolution. We generated several variant groups and identified the optimal one through functional comparisons in wet experiments.

Furthermore, this part significantly contributes the iGEM community by expanding enzyme availability. The BIND-System reduces concerns about purification costs and quality, making them negligible. It also allows for maintaining and reusing proteins with unstable activity. By replacing the bearPETase portion with other BioBricks, any enzyme's use can be simplified.

Components

1. Optimized RBS for BIND-System (Waseda-Tokyo2024, BBa_K5436005)

This RBS is designed to efficiently drive the BIND-System. In some existing BioBricks, inappropriate RBS strength can either overload E. coli with excessive expression or result in no expression. We've designed an RBS to optimize the amount of CsgA displayed on E. coli’s surface as components of curli fibers, which will aid future iGEMers using the BIND-System.

2. csgA-taa(Waseda-Tokyo2024, BBa_K5436006)

CsgA-taa is a modified version of BBa_K1583000 from iGEM15_TU_Delft, with the stop codon removed, enabling the expression of the desired protein in a fused state after the Curli fiber formation factor CsgA.

3. BamHI_Linker (Waseda-Tokyo2024, BBa_K5436020)

This uses the BamHI recognition site, which consists of 6 nucleotides, directly as a linker. The BamHI recognition site encodes glycine and serine, which are commonly used amino acids in linker sequences.

4. bearPETase (Waseda-Tokyo2024, BBa_K5436015 )

BearPETase was rationally designed by Waseda-Tokyo 2024 to enhance its enzymatic activity. As shown below, we confirmed that its enzymatic activity surpassed that of existing variants. The existing PETase variants include depoPETase and duraPETase, and combining both was expected to improve enzymatic activity. Based on that consideration, we created 81 combinations, excluding the overlapping mutations Q119Y and Q119R, and generated 3D structures using AlphaFold 2, selecting those with stable structures.

5. 6x HisTag (Waseda-Tokyo2024, BBa_K5436021)

It is useful in protein purification and also beneficial for Western blotting, where anti-His Tag antibodies are used as primary antibodies.

Cloning & Expression

Molecular Cloning

We used NEBuilder HiFi DNA Assembly [^5] to obtain plasmids encoding BIND-bearPETase. The DNA fragments encoding bearPETase were prepared with Gene Fragments Synthesis Service (Twist Bioscience).

After culturing and miniprepping, we ran electrophoresis, observing bands near the expected size. Sequence analysis confirmed the correct plasmid sequences.

Functional Characterization

Wet実験でBIND-bearPETaseの機能を調べた。その際、BIND-bearPETaseの祖先配列であるBIND-PETase(WT)(BBa_K5436130), BIND-duraPETase(BBa_K5436133)と、同様の設計思想で創られたBIND-PETase(ID23)(BBa_K5436123)とBIND-bearPETaseを比較した。その結果を以下にドキュメントする。

Curli Fiber Formation Assay

BIND-bearPETaseのCurli Fiber形成能力を定量的に測った。Curli Fiberが正しく形成されているかどうかは、酵素の安定性や再利用性にとって最重要である。

BIND-bearPETaseを発現した大腸菌を遠心し、生じたペレットは、Fig. 6のように複数回ピペッティングしても崩れない強固な構造を持っていた。これは、BIND-bearPETaseの過剰発現によるCurli Fiberの形成により、大腸菌がバイオフィルム構造を取っていたと考えられる。

Curli Fiber Formation Assayでは、Congo Red染料を用いてCurli fiberを染色し、遠心し、上清の色を確認する。ペレットにCongo Red色素が取り込まれて、上清が薄いならば、Curli Fiberが正常に形成されたことが確認できたといえる。

BIND-bearPETaseにおける観察結果がFig.6である。Fig.6から、BIND-bearPETaseの存在依存にして、Curli Fiberが生じ、染色されている事が分かる。

更に、定性的な判断だけではなく、上清の吸光度を計測し、BIND-bearPETaseと他の変異体と比較した (Fig. 8)。

BIND-bearPETaseはBIND-PETase(WT) よりCurli Fiber形成能が低い一方で、BIND-duraPETaseよりもCurli Fiber形成能が高かった。また、BIND-bearPETaseとBIND-PETase(ID23)は、同じ程度のCurli Fiber形成能力を持っている事が分かった。

これらの結果から、BIND-bearPETaseは、Curli Fiber形成能力の観点で、BIND-duraPETase よりも、BIND-Systemにより適合したPETaseであると言える。野生型配列のCurli形成能は、変異体よりも高かったが、改善されたPETaseをBIND-PETaseを実用化するという面では、bearPETaseが有利であると考えられる。

他にも、ここに示していない数多くの変異体とBIND-bearPETaseを比較しながら、BIND-bearPETaseを評価した。その過程は、Waseda-Tokyo2024のWikiのEngineering Successに示されている。

pNPB Hydrolysis Assay

BIND-bearPETaseの活性を簡易的に評価した(Fig. 8)。 para-nitrophenyl butyrate(pNPB)は加水分解されると黄色のpara-nitrophenol(pNP)が生じ、私たちはこれを測定した。ただし、pNPBに対する加水分解活性の大小は、必ずしもPET polymerに対する活性の大小と一致しない場合もある。その為、pNPB Hydrolysis Assayでは、活性の簡易的な評価しかできないころに注意したい。(後述するPET Bottle Powder Degradation Assayで、最もPETを実用的に分解したのは、BIND-bearPETaseの方であった。)

BIND-bearPETaseとBIND-PETase(ID23)の活性は、祖先配列であるBIND-PETase(WT)、BIND-duraPETaseに比べて上昇している事が確認できた。BIND-duraPETaseは、WTよりも活性が高くなるように、設計されていたが、Waseda-TokyoがデザインしたBIND-bearPETaseおよびBIND-PETase(ID23)は、それらを凌駕する性能を持ち、PETaseの実用化を目指す上でより有利な特徴を持つことが示唆された。

Storage Activity Assay & Reusability Assay

ここでは、BIND-bearPETaseが持つPETaseの社会実装における強みである酵素のStabilityとReusabilityについて、実験的に検証した結果を記録する。

Storage Activity Assay

BIND-PETase各種は、生きたまま大腸菌を利用する全細胞型生体触媒であるため、適切な環境で保存することによりタンパク質の発現や大腸菌の増殖が起き、活性が上昇する。BIND-bearPETaseを4℃または室温で保存したときの、発現後0日目、5日目, 11日目の活性をpNPB Hydrolase Assay により評価した(Fig. 10.)。また、保存温度を4°CまたはRTに変化させた際の活性の増大具合を確認した。

保存期間中、BIND-PETase(WT), BIND-duraPETaseに比べて、BIND-duraPETaseを元に設計されたBIND-bearPETaseおよびBIND-PETase(ID23)は、時間経過に伴う活性上昇が大きかった。

RTでの保存で、最も活性の上昇が大きかったのはBIND-PETase(ID24)であった。この結果より、BIND-bearPETaseは、BIND-PETase(WT)、BIND-duraPETaseよりも保存による利便性が高く、実用化において有利であるといえる。

Reusability Assay

BIND-bearPETaseは、一度反応した後、再回収して、3回繰り返し使用しても、 pNPB Hydrolase Assayにより活性の存在を確認する事ができた。BIND-PETase(WT)と他の変異体でも再利用後の活性が確認出来た(Fig. 12)。

この測定においては、どうしても酵素の再回収の際に、反応した後の産物pNPが混入してしまい、正確に再利用能を測定することは困難であったが、wash操作を可能な限り行い、出来る限り正確な測定を試みた。

BIND-PETase(WT)は再利用により活性がやや低下した。一方、BIND-duraPETase, BIND-PETase(ID23)およびBIND-bearPETaseは再利用時に、活性の上昇が見られた。 これには、前回反応産物pNPが、BIND-PETaseの再回収の段階での混入したことが理由として考えられるが、一度反応を行う事によるPETase酵素の折り畳みの促進も活性上昇の理由として考えられる。

再利用により活性が上昇した原因は特定できなかったが、少なくともBIND-bearPETaseは、酵素の再利用を行っても著しく活性を損なうことはないことが確認でき、実用化において有利であるといえる。

PET Bottle Powder Degradation Assay

**BIND-bearPETaseがPET powderに対し、他の変異体に比較して非常に高い実用的な活性を持っていることを確認した。**生活で誰しもが用いるPETボトルを紙やすりで粉砕し、BIND-bearPETaseを作用させた。PETaseは、PET polymerを分解し、TPA、MHET、BHETを生。。

Waseda-Tokyo2024は、 BIND-bearPETaseがPETを分解することで生じる産物TPA, MHET, BHETをHPLC(High-Performance Liquid Chromatography)によって定量した(Fig. 13.)。なお、反応条件は、pH7.0だけでなく、多くのPETaseは至適条件がpH 8.5以上であるとされておおり^[6]、pH9.0でも反応させた。反応後1日後、3日後の結果を測定した。

このように、BIND-bearPETaseによって産物TPA, MHET, BHETが生じている事が確認できた。また、最適pHはBIND-bearPETaseにおいても、pH9.0であることが示唆された。

さらに、それらの分解産物の量を定量的に比較した(Fig. 15.)。 BIND-bearPETaseと同様の設計思想で作成したBIND-PETase(ID23)と、共通祖先であるBIND-duraPETaseを用いて、その3つを比較した。**その結果、pNPBの分解による簡易的な活性確認の結果とは逆転して、BIND-PETase(ID23)よりも、BIND-bearPETaseが最もPET Bottle Powderを分解した。**BIND-bearPETaseは、祖先であるBIND-duraPETaseの10倍、兄弟であるBIND-PETase(ID23)の1.5倍の活性を持つ。このことから、Waseda-Tokyoが開発したbearPETaseは、BIND-Systemに適合されており、高い実用的活性を示す事が分かった。

Plastic Pellet Degradation Assay

さらに、Waseda-Tokyo2024は、BIND-bearPETaseがどこまで実用的であるかを考察するために、リサイクル工場に存在するプラスチックペレットに対し、BIND-bearPETaseを作用させた。ここでは、ペレットの重量を測定する事で、その分解を確認する事ができた。

挿入予定

Fig. 15. Degradation of Plastic Pellets

なお、このペレットは、実際にプラスチックリサイクルを行う企業esaに尋ね、譲渡していただくことができた。 We would have liked but I'd like to take this opportunity to thank esa’s kindness.

Simulation

執筆担当者：@Yuto TORIYAMA @Shota Yamamoto 調整お願いします
in silicoスクリーニング
pyRosseta自由エネルギーの値　安定性が高いアピール
分子ドッキング
Auto Dock Vinaが出力するエネルギー　活性が高いアピール
ドッキング図　ちゃんと結合するアピール
MACE

私たちは、Wet実験に加えてコンピュータを用いたbear-PETaseの特性検証を行った。私たちが用いたツールは以下の通りである。

• Auto Dock VIna [^8]
• PyRosetta [^9]
• MACE
• FoldX [^10]

Auto Dock Vinaが出力するエネルギーの値から結合親和性を評価することができる。エネルギーが低いほど結合親和性が高く、結合親和性が高ければ実際のWet実験で活性が高くなることが期待できる。PyRosettaが出力する自由エネルギーの値からPETase(BIND-ETase)の構造の安定性を評価することができる。MACEは私たちが構築した機械学習モデルであり、○○。FoldXは...

Auto Dock VIna

Method

Auto Dock Vinaを用いた検証ではPET2量体のPDBQTファイルと BIND-PETase(WT)、 BIND-duraPETase、BIND-PETase(ID23)、BIND-bearPETase(ID24)のPDBQTファイルを用意して分子ドッキングを実行した。PET2量体のPDBQTファイルとした理由は、PETaseはPETを分解するタンパク質であるので2量体以上であることが必要であるから、エネルギーの比較であれば2量体で十分であるからである。Auto Dock Vinaが出力したエネルギーの値を用いてbearPETaseの結合親和性を評価した。

Results

Auto Dock Vinaを用いて

PyRosettaを用いた検証では BIND-PETase(WT)、 BIND-duraPETase、BIND-PETase(ID23)、BIND-bearPETase(ID24)のPDBファイルを入力し、PyRosettaが出力する自由エネルギーの値を用いてbearPETaseの構造の安定性を評価した。

MACEを用いた検証では...

FoldXを用いた検証では...

Model
執筆担当者：@Yuto TORIYAMA @Joseph Yokobori 調整お願いします
膜外輸送モデル＋PET分解効率のモデル
Wetで検証できなかったサーフェスディプレイ
PETの長さ, Fiberの長さからPET分解量を計算する

本パーツを実装するにあたって、大腸菌内での物質発現からPET分解につながる過程を示す必要ある。そのため、modelingによって膜外輸送の過程からPET分解までの一連の過程が成立することを示した。
膜外輸送において、BIND-PETaseにおけるcsgAの発現だけでなく、大腸菌内にはcurli fiberを形成するために必要な分子を発現できる仕組みが存在する。この機構を介してcsgAが大腸菌外に移動するため、この流れを定量化した。次に膜外輸送されたcsgAがを形成し、そこに結合したPETaseがPET分解を行う。PETの長さとfiberの長さに応じたPET分解量を定量化した。
一連の流れの定量化により、本プロジェクトで打ち出したPET分解が十分機能することを評価できた。

Conclusion
執筆担当者：@Ryojun Hayashizaki
Introductionの要約
結果を元に改めて性質を強調説明

Waseda-Tokyo iGEM 2024チームは、「BIND-bearPETase」という新たな酵素システムを開発し、PET（ポリエチレンテレフタレート）分解を効率化しました。また、この技術は、他の酵素にも応用でき、BIND-Systemを活用することで酵素の精製コストを削減し、利便性を向上できることを示唆しました。

Wet Experimentsでは、精製をせずとも、PETを加水分解する活性が利用可能であることを示した。さらにそれが、日常に存在する身近なPETボトル由来のPETに適用可能であることを示し、このパーツの実用可能性を示した。

また、他のBIND-PETase変異体よりも、BIND-bearPETaseが高い加水分解活性を持つことを確認できた。さらにそれは、長期間保存しても、活性が維持されることや、酵素の再利用が可能であることを、実験的に示した。

さらに、この技術は、PETリサイクルの効率を向上させるだけでなく、他の酵素にも応用可能で、iGEMコミュニティ全体に大きな貢献を果たしています。BIND-Systemにより、酵素の精製コストが削減され、使用の利便性も向上しました。

References